腺苷清醇独具香，静静慢嚼细品尝。

促进记忆提神醒，疲劳困顿快速扛。

血管扩张降压力，心脏健康喜乐长。

腺苷滋补人体好，生活美好心情爽。

腺苷（Adenosine, Ado）是一种重要的信号分子，在睡眠、学习记忆、心血管功能及免疫反应等过程中发挥着重要作用。异常的腺苷信号往往伴随着疼痛、癫痫、中风及神经退行性疾病[1]。早在1929年，Alan Drury和Albert Szent-Györgyi（1937年诺奖获得者）发现，把腺苷类化合物注射到豚鼠中，1-2分钟后豚鼠变得“呼吸急促、无精打采，倾向于安静地躺着、偶尔睡着”，这提示腺苷可能具有调控神经系统的功能[2]。1974年，John Phillis等人发现，胞外的腺苷能够显著地抑制神经元发放动作电位[3]；咖啡一因、茶碱均可阻断腺苷信号通路，从而起到提神醒脑的功能。尽管科学家对胞外腺苷的功能研究已经非常深入，然而对于腺苷释放如何被调控这一问题，始终存在争议。

2023年3月30日，北京大学生命科学学院、IDG麦戈文脑科学研究所李毓龙教授团队联合北京脑科学与类脑研究所罗敏敏研究员团队，在《美国科学院院刊》PNAS在线发表了题为“Neuronal activity-induced, equilibrative nucleoside transporter-dependent, somatodendritic adenosine release revealed by a GRAB sensor”的研究论文。在这项研究中，作者利用新型GRAB荧光探针，详细地研究了神经元活动引发腺苷释放的细胞及分子机制，并揭示了一种非经典的神经调质释放模式。

胞外腺苷来源的争议可以归结为以下几个方面：（1）在细胞水平上，腺苷是来源于神经元还是相邻的胶质细胞？（2）腺苷释放是否具有亚细胞结构的特异性，从突触前还是突触后释放？（3）在分子水平上，腺苷是通过胞外的三磷酸腺苷（ATP）的降解产生；还是通过核苷转运蛋白或突触囊泡直接被释放？

研究胞外腺苷的来源、释放及调控机制的难点在于缺乏可视化检测腺苷的方法。2020年，李毓龙教授团队和徐敏研究员团队联合报道了一种基于G蛋白偶联受体激活原理（GRAB）的胞外腺苷荧光探针GRAB-Ado1.0[4]，Ado1.0对胞外腺苷的亲和力是~60 nM（详情链接：【内含新品】《Science》李毓龙/徐敏合作发现基底前脑谷氨酸能神经元调控睡眠稳态因子腺苷）。在本次报道的研究中，为了进一步扩展探针的检测范围，作者首先通过筛选得到了一个~3.2 μM的低亲和力版本Ado1.0m，该探针表现出更大的响应幅度（大于300%）和对腺苷的高特异性。

利用新版Ado1.0m探针，作者成功地在海马急性脑片CA1位置检测到电刺激引发的胞外腺苷水平的上升。有趣的是，作者发现阻断CA3到CA1的谷氨酸突触传递只能部分阻断胞外腺苷水平的上升。那么胞外的腺苷是来源于CA1局部的胞体树突（突触后）还是CA3的轴突投射（突触前）？结合光遗传学工具和胞外腺苷成像，作者发现在阻断谷氨酸突触传递的基础上同时激活CA3轴突，并不能引发腺苷释放；而当激活CA1胞体树突时则发现，胞外腺苷水平表现出刺激时长依赖的增加（图1）。以上结果表明，在亚细胞水平上，胞外腺苷主要来源于CA1的胞体树突（突触后）。

图1：激活CA1胞体树突引发胞外腺苷水平的上升

随后，作者使用培养的海马神经元体系研究胞外腺苷来源的分子机制。结合GRAB腺苷探针、谷氨酸探针及药理学、遗传学等手段，作者发现：在细胞水平上，通过电场刺激能够引发腺苷的释放，而当通过河豚.毒素、氯化.镉分别阻断表达在神经元上的电压敏感的钠离子和钙离子通道时，腺苷的释放也被阻断，表明胞外的腺苷来源于神经元；当激活星形胶质细胞时，则没有检测到胞外腺苷水平的上升。进一步的，作者还发现胞外腺苷水平的上升主要依赖于的L型钙离子通道，胞内钙库的激活也能引发腺苷的释放。

分子水平上，破伤风神经毒素能够有效地阻断突触囊泡释放的谷氨酸，却无法阻断腺苷的释放，表明腺苷的释放不依赖于SNARE蛋白介导的胞吐过程；阻断CD39或者敲除CD73（胞外ATP降解成腺苷的限速酶）对胞外腺苷的释放没有明显的影响，表明CD39-CD73介导的胞外ATP降解途径对电刺激引发的腺苷释放贡献不大；有意思的是，通过药理学手段阻断或者遗传学手段敲除细胞膜表达的平衡核苷转运蛋白（ENTs），大部分腺苷的释放被阻断，表明在神经元被激活时，胞外腺苷水平的上升主要依赖于ENT转运蛋白（图2）。

图2：神经元活动引发腺苷释放的模式图

综上，作者发现在海马中神经元活动诱导的胞外腺苷升高主要是由神经元释放的，并取决于ENTs，而不是通过传统的囊泡释放机制；与经典神经递质相比，胞外腺苷积累缓慢（约40秒）并且需要L-型钙离子通道。重要的是，作者发现腺苷主要由突触后直接释放，而不是突触前；基于在突触前膜有丰富的腺苷受体表达，表明突触后释放的腺苷是一个潜在的逆行调控分子（图2）。由于腺苷信号传递及其代谢参与多种生理（睡眠-觉醒调控等）及病理过程（癫痫、中风、疼痛、帕金森病，乃至肿瘤发生等），这项基础研究为理解腺苷的作用机理提供了重要参考，也为腺苷相关疾病的治疗提供了潜在的药物靶点。

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武照伐博士、崔玉婷博士和王欢博士为本文的共同第一作者，李毓龙教授和罗敏敏研究员为共同通讯作者，吴昊、万逸博士、李柏翰、王蕾、潘孙磊、彭婉玲博士、董傲博士、袁正巍博士和井淼博士等对前期探针的开发和刻画做出了重要贡献。论文的合作者还包括中国科学院脑科学与智能技术卓越创新中心的徐敏研究员，并得到了北京大学膜生物学国家重点实验室、北大-清华生命科学联合中心、北京大学IDG麦戈文脑科学研究所、国家自然科学基金、北京市科委、生命医学峰基金、新基石研究员项目、科技创新2030-“脑科学与类脑研究”青年科学家项目、勃林格殷格翰博士后基金和北京市科协“青年人才托举工程”等机构、经费和项目的大力支持。

通讯作者介绍

李毓龙，北京大学生命科学学院教授，博士生导师，北京大学IDG麦戈文脑科学研究所PI、北大-清华生命科学联合中心PI。

研究领域：集中在神经元通讯的基本结构突触上，从两个层面上开展研究：一、开发前沿的工具，即开发新型成像探针，用于在时间和空间尺度上解析神经系统的复杂功能；二是借助先进的工具探究突触传递的调节机制，特别是在生理及病理条件下对神经递质释放的调节。

具体而言，对于工具开发，集中于：

1、结合光遗传学和荧光成像，无损伤性的研究神经元之间的电突触连接。电突触的异常可导致耳聋、癫痫、脑部肿瘤和心脏功能异常等疾病。

2、开发可遗传编码的检测神经递质/调质的荧光探针。神经递质/调质是神经元化学突触传递的关键介导分子，与感知、学习和记忆以及情绪密切相关。

利用上述荧光探针，功能性和生理性的研究集中于：

1、结合生物信息学、分析化学、生物化学、生理学和成像学方法，系统地探索和鉴定潜在的新型小分子神经递质。

2、研究神经元中重要的分泌性囊泡“高密度核心囊泡”的蛋白质组学，分析囊泡内的神经肽组成。这些神经肽对于调节食物摄取、侵犯性行为和生物节律有重要的调节作用。

3、寻找上述新型化学递质/调质小分子的对应受体，即寻找“孤儿”受体的配体。

4、结合双光子成像和可遗传编码的荧光探针，使用果蝇和小鼠作为模式生物，研究嗅觉传导或睡眠过程中脑的工作机制。

罗敏敏，研究员，北京生命科学研究所资深研究员，北京脑科学与类脑研究中心特聘研究员。罗敏敏研究员实验室以转基因小鼠为模型，研究哺乳动物处理奖赏与惩罚的神经环路机制，特别是中缝背核及内侧缰核两个脑区及相连的神经环路的作用。运用电生理和光学成像，从清醒小鼠中记录特定类型神经元在奖赏与惩罚相关行为中的反应特点。继而运用光遗传学及化学遗传学手段，检测激活、抑制、损毁相关神经元对于行为的影响。也利用全细胞膜片钳和光学成像等手段，探索不同药物及细胞信号转导途径在奖赏与惩罚行为中的作用及分子细胞机制。脑内处理奖赏与惩罚的神经环路异常导致多种人类精神疾病，包括抑郁、精神分裂、药物成瘾等。因此，该实验室的工作不仅有助于理解与奖赏与惩罚相关行为的神经生物学基础，亦可具有临床意义。

参考文献

[1] Chen, J. F., Eltzschig, H. K. & Fredholm, B. B. Adenosine receptors as drug targets--what are the challenges?Nat Rev Drug Discov 12, 265-286, doi:10.1038/nrd3955 (2013).

[2]Drury, A. N. & Szent-Gyorgyi, A. The physiological activity of adenine compounds with especial reference to their action upon the mammalian heart.J Physiol 68, 213-237, doi:10.1113/jphysiol.1929.sp002608 (1929).

[3] Phillis, J. W., Kostopoulos, G. K. & Limacher, J. J. Depression of Corticospinal Cells by Various Purines and Pyrimidines.Canadian Journal of Physiology and Pharmacology 52, 1226-1229, doi:10.1139/y74-162 (1974).[4] Peng, W.et al. Regulation of sleep homeostasis mediator adenosine by basal forebrain glutamatergic neurons. Science369, doi:10.1126/science.abb0556 (2020).

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